Skip to main content

Effects of hemolysis interference on routine biochemistry parameters

Abstract
Introduction: Hemolysis is still the most common reason for rejecting samples, while reobtaining a new sample is an important problem. The aim of this study was to investigate the effects of hemolysis in different hemolysis levels for mostly used biochemical parameters to prevent unnecessary rejections.
Materials and methods: Sixteen healthy volunteers were enrolled in the study. Four hemolysis levels were constituted according to hemoglobin concentrations and they were divided into five groups: Group I: 0-0.10 g/L, Group II: 0.10-0.50 g/L, Group III: 0.51-1.00 g/L, Group IV: 1.01-2.50 g/L, Group V: 2.51-4.50 g/L. Lysis was achieved by mechanical trauma.
Results: Hemolysis interference affected lactate dehydrogenase (LD) and aspartate aminotransferase (AST) almost at undetectable hemolysis by visual inspection (plasma hemoglobin < 0.5 g/L). Clinically meaningful variations of potassium and total bilirubin were observed in moderately hemolyzed samples (hemoglobin > 1 g/L). Alanine aminotransferase (ALT), cholesterol, gamma glutamyltransferase (GGT), and inorganic phosphate (P) concentrations were not interfered up to severely hemolyzed levels (hemoglobin: 2.5-4.5 g/L). Albumin, alkaline phosphatase (ALP), amylase, chloride, HDL-cholesterol, creatine kinase (CK), glucose, magnesium, total protein, triglycerides, unsaturated iron binding capacity (UIBC) and uric acid differences were statistically significant, but remained within the CLIA limits.
Conclusion: To avoid preanalytical visual inspection for hemolysis detection, improper sample rejection, and/or rerun because of hemolysis, it is recommended in this study that, routine determination of plasma or serum free hemoglobin concentrations is important. For the analytes interfered with hemolysis, new samples have to be requested.
Key words: hemolysis; preanalytical errors; interference; analytes.
Introduction
Hemolysis is the most common preanalytical source of error in clinical laboratories and responsible for nearly 60% of rejected samples (1,2). It may occur both in vivo or in vitro. The ratio of in vivo hemolysis is only 3.2% of all the hemolyzed specimens (3). In vitro hemolysis occurs more often and it is caused by improper sample drawing, handling or centrifugation. Especially hardly collected samples, or stored and/or transported, have increased risks for hemolysis.
Most of the hemolyzed samples are being rejected on pre-analysis stage according to the visual detection of serum interferences, even if the requested tests may not be interfered with hemolysis. Besides, according to the reports, visual assessment of sample hemolysis showed little agreement with the actual concentration of hemoglobin interferent (4-7).
Conversely, even if the hemolysis is not visible, there is also a discharge of the cell constituents into serum or plasma (8). So invisible hemolysis is an important cause of false results and has to be detected before the investigation procedure. Increased number of biochemical tests, number of samples and increased automation obligated laboratory staff to study harder, give results faster, so pre-analytical determination of hemolyzed sample and determination of interfered analytes before analysis became more important.
Since the knowledge of possible effects is important for correct interpretation of the results, the aim of the present work was to evaluate the effects of hemolysis interferences in different levels on routine commonly used biochemistry tests. Results of this study may help to prevent unnecessary rejections of samples.
Materials and methods
The venous blood samples, collected from 16 healthy volunteers, were taken into 5 different heparinized tubes (Vacuette ®, Greiner Labortechnik, Germany) to study the effect of in vitro hemolysis. Four samples were drawn through the needles of 5 mL syringe (1.5 inch, 21 gauge) speedily for 2, 4, 6 and 8 times respectively to lyze the cells by mechanical trauma to obtain slightly, mildly, moderately and severely hemolyzed samples. They were all centrifuged at 1000 x g for 15 minutes. This method of cell lysis was chosen because blood transferring into a tube by pushing forcely down on the syringe plunger is analogous to the mechanical disruption of erythrocytes that frequently occurs during blood collection. In this method there is no standardization way of the force applied while transferring the blood by syringe. Besides every patients’ fragility of red blood cell is different, so free Hb concentrations of all samples were not correlated with the force.
After measuring free Hb concentrations of the hemolyzed samples, the samples were grouped according to their free Hb concentrations. The exclusion criteria of a hemolyzed sample was the concentration of its free Hb concentration discordant with the degree of hemolysis determined for each group, so the number of samples were not equal at each group.
Free Hb of the samples were measured spectrophotometrically (Shimadzu Corporation; Kyoto, Japan) with Na2CO3 solution (10 mg/100 mL) as a reagent (9). Absorbances were measured at 415, 450 and 700 nm for all hemolyzed and diluted plasma.
Total plasma hemoglobin was calculated according to the formula:
Hb = 154.7 × (A425) – 130.7 × (A450) – 123.9 × (A700) (9).
(Reference ranges: 0-0.1 g/L for plasma free Hb).
Specimens were categorized according to the Hb concentrations into 5 groups:
- Group I (0-0.1 g/L), nonhemolyzed (N = 15);
- Group II (0.10-0.50 g/L) slightly hemolyzed (N = 12);
- Group III (0.51-1.00 g/L) mildly hemolyzed (N = 10);
- Group IV (1.01-2.50 g/L) moderately hemolyzed) (N = 15);
- Group V (2.51-4.5 g/L) severely hemolyzed (N = 12).
The results were analyzed to determine if slight, mild, moderate or severe hemolysis had a significant impact on the analyte concentrations.
All analytes were measured with Olympus analyzer with original reagents (Olympus AU2700 system reagent, Olympus Diagnostica GmbH, Lismeehan, O’Callaghan’s Mills, Co. Clare, Ireland).
Plasma concentrations of albumin, alkaline phosphatase (ALP), alanine aminotransferase (ALT), α-Amylase, aspartate aminotransferase (AST), total bilirubin, calcium, sodium, potassium, chloride, total cholesterol (TC), creatine kinase (CK), creatinine, gamma glutamyltransferase (GGT), glucose, high density lipoprotein cholesterol (HDL-C), iron (Fe), lactate dehydrogenase (LD), magnesium, inorganic phosphate, total protein, triglyceride (TG), unsaturated iron binding capacity (UIBC), urea, uric acid were analyzed in all groups.
The effects of the hemolysis were evaluated according to the total allowable error recommendations of Clinical Laboratory Improvement Amendments (CLIA’88) (10) (Table 1). CLIA’ 88 regulations have established fixed limits for assessing method and laboratory performance for specific regulated analytes. In practice, the total allowable error for a given analytical method must be less than the respective CLIA fixed limits for the analyte in question.
Statistical analysis
To compare the concentrations of the hemolyzed samples with nonhemolyzed samples, bias percentage was calculated by the formula:
[(CX – C1)/ C1)] x 100.
C1: concentration of nonhemolyzed sample,
CX: concentration of hemolyzed sample.
All analyses were performed using Statistical Package for Social Sciences statistical package (SPSS, version 15.0 for Windows XP). Wilcoxon signed-rank test analysis was used; P values < 0.05 were considered statistically significant.
Results
As a result of the mechanical trauma, the median free Hb concentrations for groups I, II, III, IV and V were measured as 0.02, 0.27, 0.75, 1.27 and 3.34 g/L, respectively. At free hemoglobin concentration 0.5 g/L, hemolysis was visible by the red color of the plasma.The results of the investigations were all presented in Table 1 and shown in Figure 1. Lactate dehydrogenase appeared to be most sensitive to hemolysis; the increase of č 1000 U of lactate dehydrogenase per liter resulted in a 4.5-fold higher enzyme activity at 4.5 g of hemoglobin per liter of plasma than at 0.27 g/L. A considerable increase of 30 U/L in aspartate aminotransferase activity was a 2.5 fold increase in this enzyme’s activity in severely hemolyzed plasma (hemoglobin < 4.5 g/L).
In electrolytes, potassium values were most affected, in direct proportion to the increased plasma free hemoglobin concentration, the average increase in potassium concentration being 1.48 mmol/L for hemoglobin concentrations up to 4.5 g/L, or about 1.4 fold (Figure 1).

Figure 1. Interferogram for hemoglobin and measured parameters: LD, AST, potassium and total bilirubin.
Table 1 Methods, median values of the analytes and free hemoglobin concentrations for each group, % bias of analyte concentrations in comparison to the nonhemolyzed group, and ± acceptable limits of CLIA’ 88, ± desirable bias. Results with higher than CLIA limits and statistically significant differences are marked in bold.










Table 1 summarizes the influence of hemolysis on routine biochemistry testing. Differences are given as median values and percentage relative bias from the baseline specimens (no lysis). As expected, LD, AST and potassium values showed significant increases approximately linearly dependent on the free Hb concentrations in hemolyzed plasma. There was a decrease (100%) in total bilirubin concentration (Figure 1).
Values of inorganic phosphorus were significantly increased linearly with the increased free hemoglobin concentrations comparing with the baseline specimens. Clinically meaningful (approximately 1.2 fold) increases in enzyme activities were observed for GGT and ALT at 4.5 g of hemoglobin per liter of plasma.
Of the analytes evaluated, the bias values recorded for albumin, alkaline phosphatase, amylase, calcium, chloride, HDL-cholesterol, creatine kinase, creatinine, glucose, iron, magnesium, sodium, total protein, triglycerides, unsaturated iron binding capacity, urea and uric acid were lower than the CLIA allowable limits even in specimens containing up to 4.5 g/L of plasma hemoglobin although for some analytes variations were statistically significant (P < 0.05) (Table 1).
Although there was no given acceptable limit for GGT in CLIA’ 88 considerations, we assumed the limit as 20% like most of the other enzymes. For the unsaturated iron binding capacity the evaluation was done according to some studies which was determined as ±10% (11,12).
Discussion
Analytic hemolysis interference occurs when the constituents of the plasma are at lower concentrations than the constituents in erithrocytes. The release of erythrocytic constituents can result in increased values for serum. Dilution is another possible effect especially for gross hemolysis, and may result in decreased values. While Hb absorbance peaks occur at č417, 540, and 575 nm and at 415 nm (Soret wave) absorbs light very strongly, therefore at these wavelengths, spectrophotometric interference occurs due to an increase in the optical absorbance or a change in the blank value (8,11-13).
Cell contents at higher concentrations of potassium, phosphate, AST and LD enter the surrounding plasma when lysis of erythrocytes occurs (8,14). As expected in the current study AST, LD, and potassium values showed clinically meaningful increases like previous investigations (8,11-17,19). So we can say that even if macroscopically invisible hemolysis occurs, AST and LD measurements may contribute to high values.
Free hemoglobin with its pseudo-peroxidase activity interferes in the bilirubin procedure by inhibiting the diazonium color formation. In our study, we found statistically low values for all groups as in literature (11) and biochemical testing has to be done for this assay with a new sample at hemoglobin concentrations higher than 1 g/L.
For cholesterol, increase in concentration was significant at 2.5 g/L of Hb levels. According to a study, the interference may result from Hb decomposition of hydrogen peroxide. This effect can be compensated for by using an appropriate sample blank (15). For HDL-C, the interference was not clinically significant up to 10 g/L of hemoglobin concentration with the same assay method (20).
Although Hb is the major source of iron, hemolysis has a very little effect on the serum iron assay which may be caused by spectral overlap and by a chemical reaction between hemolysate and reaction components like ALP, GGT, amylase and iron assays (11,12,21).
We found a slight decrease in glucose and uric acid. This effect may become from a premature decomposition of hydrogen peroxide by Hb (15). Dilutional effect caused by the leakage of intracellular components into the surrounding fluid especially in severe hemolysis may cause lower values for glucose, sodium and calcium (14,19). In this study no lysate or any other solution was added in specimens which may also has a dilutional effect on the analysis.
Although CK is not a constituent of erythrocytes, intracellular adenylate kinase has been attributed to the interference in the CK assay (14,19). Correction can be done by adding inhibitors such as adenosine monophosphate and diadenosine pentaphosphate, or by substracting the activity measured in the absence of creatine phosphate (21).
Nowadays serum hemolysis index is a popular solution for interference detection preanalytically. Manufacturers give the list of test-specific serum indices for hemolysis, lipemia and bilirubin interferences. This can help laboratory staff to be aware of interference, study or reject the sample, and add comments to the results. But the standardization problem of the various analytical systems and different decision thresholds for various serum indices requires more effort (22).
Conclusion
We conclude that hemolysis affects plasma concentration of a whole range of biochemical parameters, whereas the most prominent effect of hemolysis is observed for AST, LD, potassium and total bilirubin. For other analytes; albumin, ALP, amylase, chloride, CK, HDL-cholesterol, glucose, magnesium, total protein, triglycerides, UIBC and uric acid, differences were statistically significant, but remained within the CLIA limits. We therefore recommend routine free Hb level determination in serum or plasma, or any other automated detection of the degree of hemolysis. Only for those analyses which are affected by the estimated degree of hemolysis, new samples have to be requested. Although time consuming, this procedure is highly useful, since it may help to avoid unnecessary rerun the samples and reduce the costs.
References : http://www.biochemia-medica.com/2011/21/79
 1. Bonini P, Plebani M, Ceriotti F, Rubboli F. Errors in laboratory medicine. Clin Chem 2002;48:691-8.
 2. Plebani M, Carraro P. Mistakes in a stat laboratory: types and frequency. Clin Chem 1997;43:1348-51.
 3. Carraro P, Servidio P, Plebani M. Haemolyzed specimens: a reason for rejection or clinical challenge? Clin Chem 2000;46:306-7.
 4. Hinckley C. Defining the best quality-control systems by design and inspection. Clin Chem 1997;43:873-9.
 5. Glick M, Ryder K, Jackson S. Graphical comparisons of interferences in clinical chemistry instrumentation. Clin Chem 1986;32:470-5.
 6. Plebani M. Laboratory errors: How to improve pre-and post-analytical phases? Biochem Med 2007;17:5-9.
 7. Simundic AM, Nikolac N, Ivankovic V, Ferenec-Ruzic D, Magdic B, Kvaternik M, Topic E. Comparison of visual vs.automated detection of lipemic, icteric and hemolyzed specimens: can we rely on a human eye? Clin Chem Lab Med 2009;47:1361-5.
 8. Thomas L. Haemolysis as influence and interference factor. eJIFCC vol 13 no 4: Available at: http://www.ifcc.org/ejifcc/vol13no4/130401002.htm. Acessed: September 25, 2010.
 9. Fairbanks VF, Klee GG. Biochemical aspects of hematology. In: Burtis CA, Ashwood ER, eds. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3rd ed. Philadelphia: WB Saunders Company; 1999. p.1673-6.
10. Clinical Laboratory Improvements Amendments of 1988. Final Rule. Laboratory Requirements. Federal Register 1992;57:7002-288.
11. Sonntag O. Haemolysis as an interference factor in clinical chemistry. J Clin Chem Clin Biochem 1986;24:127-39.
12. Jay DW, Provasek D. Characterization and mathematical correction of hemolysis interference in selected Hitachi 717 assays. Clin Chem 1993;39:1804-10.
13. Grafmeyer D, Bondon M, Manchon M, Levillain P. The influence of bilirubin, haemolysis and turbidity on 20 analytical tests performed on automatic analysers. Results of an interlaboratory study. Eur J Clin Chem Clin Biochem 1995;33:31-52.
14. Lippi G, Salvagno LG, Montagnana M, Brocco G, Guidi GC. Influence of hemolysis on routine clinical chemistry testing. Clin Chem Lab Med 2006;44:311-6.
15. Yucel D, Dalva C. Effect of in vitro hemolysis on 25 common biochemical tests. Clin Chem 1992;38:575-7.
16. Scott MG, Heusel JW, Le Grys VA, Siggaard AO. In: Burtis CA, Ashwood ER, eds. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 4th ed. Philadelphia: WB Saunders Company; 2006.p.1058-60.
17. Randall AG, Garcia-Webb P, Beilby JB. Interference by haemolysis, icterus and lipaemia in assays on the Beckman Synchron CX5 and methods for correction. Ann Clin Biochem 1990;27:345-52.
18. Ricos C, Alvarez V, Cava F, Garcia –Lario JV, Hernandez A, Jimenez CV, et al. Current databases on biologic variation: pros, cons and progress. Scan J Clin Lab Invest 1999;59:491-500.
19. Frank JJ, Bermes EW, Bickel MJ, Watkins BF. Effect of in vitro hemolysis on chemical values for serum. Clin Chem 1978;24: 1966-70.
20. Nauck M, März W, Wieland H. New immunoseparation-based homogeneous assay for HDL-cholesterol compared with three homogeneous and two heterogeneous methods for HDL-cholesterol. Clin Chem 1998;44:1443-51.
21. Szasz G, Gerhardt W, Gruber W, Bernt E.Creatine kinase in serum:2. Interference of adenylate kinase with the assay. Clin Chem 1976;2:1806-11.
22. Simundic AM, Topic E, Nikolac N, Lippi G. Hemolysis detection and management of hemolysed specimens. Biochemia Medica 2010;20:154-9.

CÁC BÀI ĐĂNG ĐƯỢC XEM NHIỀU

Atlas CÁC DÒNG TẾ BÀO MÁU BÌNH THƯỜNG

ATLAS CÁC DÒNG TẾ BÀO MÁU BÌNH THƯỜNG DÒNG BẠCH CẦU   1. Hemocytoblast (Nguyên bào máu) 2. Myeloblast (Nguyên tủy bào) 3.Neutrophil promyelocyte (Tiền tủy bào trung tính) 4. Neutrophil myelocyte (Tủy bào trung tính) 5. Neutrophil metamyelocyte (Hậu tủy bào trung tính) 6.Neutrophil band (Bạch cầu đũa) 7. Neutrophil segmented (Bạch cầu đoạn trung tính) 8.  Neutrophil myelocyte/metamyelocyte/band/segmented (Tủy bào/Hậu tủy bào/bạch cầu đũa/bạch cầu đoạn trung tính)   9. Eosinophil promyelocyte (Tiền tủy bào ưa acid) 10. Eosinophil myelocyte (Tủy bào ưa acid) 11. Eosinophil metamyelocyte (Hậu tủy bào ưa acid) 12. Eosinophil band (Bạch cầu đũa ưa acid) 13. Eosinophil segmented (Bạch cầu đoạn ưa acid) 14. Neutrophil/Eosinophil segmented (Bạch cầu đoạn trung tính/Bạch cầu đoạn ưa acid) 15. Basophil myelocyte (Tủy bào ưa base) 16. Basophil segmented (Bạch cầu đoạn ưa base) DÒNG LYMPHO...

CHỈ SỐ HỒNG CẦU LƯỚI THỰC (Corrected Reticulocyte Count - CRC) LÀ GÌ? TẠI SAO VIỆC XÁC ĐỊNH NÓ CÓ VAI TRÒ CỰC KỲ QUAN TRỌNG TRONG ĐÁNH GIÁ TÌNH TRẠNG THIẾU MÁU

CHỈ SỐ HỒNG CẦU LƯỚI THỰC (Corrected Reticulocyte Count - CRC) LÀ GÌ? TẠI SAO VIỆC XÁC ĐỊNH NÓ CÓ VAI TRÒ CỰC KỲ QUAN TRỌNG TRONG ĐÁNH GIÁ TÌNH TRẠNG THIẾU MÁU Hầu như các bạn đều biết đến Chỉ số Hồng cầu lưới máu ngoại vi (Reticulocyte-Ret) và vai trò quan trọng của nó. Tuy nhiên, việc đánh giá thiếu máu dựa vào chỉ số Ret có thể dẫn tới sai lầm, vậy tại sao lại sai lầm, và để tránh sai lầm trong đánh giá người ta dùng chỉ số gì? Câu trả lời, đó là CRC - chỉ số hồng cầu lưới thực. 1. Hồng cầu lưới ở máu ngoại vi (Ret) là gì? Vai trò của hồng cầu lưới 2. Sai lầm khi sử dụng chỉ số Ret trong đánh giá thiếu máu 3. Chỉ số hồng cầu lưới thực (CRC - Corrected reticulocyte count) 1. RETICULOCYTE COUNT (Chỉ số hồng cầu lưới máu ngoại vi) Hồng cầu lưới (RET) là các hồng cầu non được giải phóng từ tủy xương ra máu ngoại vi. Sau 24h ở máu ngoại vi, Ret sẽ "chín" và trở thành hồng cầu trưởng thành. CÁCH XÁC ĐỊNH Có thể dễ dàng xác định Ret bằng cách...

TẠI SAO PHỤ NỮ MANG THAI LẠI CÓ SỰ TĂNG SỐ LƯỢNG BẠCH CẦU?

 TẠI SAO PHỤ NỮ MANG THAI LẠI CÓ SỰ TĂNG SỐ LƯỢNG BẠCH CẦU? Trong thời kỳ mang thai, số lượng bạch cầu tăng thêm kho ảng < 6 G/L. Tăng bạch cầu này xảy ra là do phản ứng stress sinh lý (the physiologic stress) gây ra bởi tình trạng mang thai.  (Stress sinh lý là một phản ứng của cơ thế đến tác nhân gây stress, ví dụ như sự thay đổi môi trường, hay một tác nhân kích thích, ở đây là tình trạng mang thai của cơ thể người nữ). Tăng bạch cầu đoạn trung tính (Neutrophils) là chủ yếu. Điều này có thể do sự suy giảm bạch cầu đoạn trung tính trong chương trình chết tế bào bạch cầu đoạn trung tính (neutrophilic apoptosis) khi mang thai. (Apoptosis hay sự chết tế bào theo chương trình là một quá trình xuyên suốt cuộc sống, giúp cơ thể loại bỏ các tế bào già cỗi, các tế bào không còn cần thiết, các tế bào sai hỏng, bị tổn thương có thể dẫn tới ung thư) Trong bào tương bạch cầu đoạn trung tính có các hạt đặc hiệu trung tính giúp hóa ứng động bạch cầu và thực bào t...

NHỮNG TÓM TẮT QUAN TRỌNG VỀ HỒNG CẦU LƯỚI VÀ CÁCH SỬ DỤNG CHỈ SỐ HỒNG CẦU LƯỚI

HỒNG CẦU LƯỚI (Reticulocytes and reticulocyte count) (Trong bài này CÓ NHIỀU KIẾN THỨC MỚI mà ít sách ở Việt Nam đề cập) 1. Sự quan trọng của hồng cầu lưới (Reticulocytes-Ret) Ret là các hồng cầu non mới được giải phóng từ tuỷ xương ra máu ngoại vi Sự xuất hiện Ret ở máu ngoại vi, là chỉ điểm (marker) cho thấy quá trình tạo hồng cầu có hiệu quả. Sự tạo hồng cầu có hiệu quả cho thấy, tuỷ xương phản ứng tốt với tình trạng thiếu máu. - Có mối tương quan giữa tăng tổng hợp và giải phóng Ret từ tuỷ xương ra máu ngoại vi, khi có tình trạng thiếu máu. 2. Có thể dễ dàng xác định được Ret ở máu ngoại vi bằng cách nhuộm máu tươi với thuốc nhuộm xanh methylene (hoặc có thể dùng xanh cresyl). Đặc điểm Ret sau nhuộm: Có những sợi ARN mảnh như sợi chỉ, nằm trong bào tương của các hồng cầu non 3. Sau 24 giờ ở máu ngoại vi, hồng cầu lưới sẽ "chín" và trở thành hồng cầu trưởng thành. Sự trưởng thành xảy ra được là nhờ sự giúp đỡ của đại thực bào ở lách. 4. Số ...

Tại sao thường sử dụng chống đông EDTA trong xét nghiệm HbA1c? Và có thể sử dụng chống đông khác (Heparin, NaF, Natri Citrat) được không?

Tại sao thường sử dụng ống chống đông EDTA để thu thập bênh phẩm máu thực hiện xét nghiệm HbA1c? Có thể sử dụng ống chống đông khác như (Na-Citrate , Heparin, Na-flouride) thay thế được không? Để trả lời cho câu hỏi này, tôi sẽ viện dẫn một nghiên cứu của Mailankot và các cộng sự (Mailankot M, Thomas T, Praveena P, Jacob J, Benjamin JR, Vasudevan DM, et al. Various anticoagulants and fluoride do not affect HbA1C level. Ind J Clin Biochem. 2012;27:209) Nghiên cứu : Tiến hành thu thập mẫu máu vào các ống chống đông EDTA, Heparin, Na-citrate, Na-flouride trên cùng một mẫu máu, rồi định lượng nồng độ (%) HbA1C trong 7 ngày, với cùng nhiệt độ bào quản 4 độ C. Kết quả cho thấy: KHÔNG CÓ SỰ THAY ĐỔI ĐÁNG KỂ NỒNG ĐỘ HbA1c ở các ống chống đông EDTA, Heparin, Na-citrate, Na-flouride khi bảo quản ở 4 độ C trong 7 ngày (xem hình ảnh biểu diễn kết quả bên dưới) Bảng thể hiện nồng độ HbA1C ở các mẫu có ĐTĐ và không ĐTĐ ở các ống chống đông khác nhau Đường biểu diễn nồng độ HbA1C ở n...

Atlas TẾ BÀO MÁU TRONG BỆNH BẠCH CẦU LEUKEMIA

ATLAS TẾ BÀO MÁU TRONG BỆNH BẠCH CẦU LEUKEMIA 1. Acute Lymphatic Leukemia (ALL-L1) - Bạch cầu cấp dòng lympho thể L1 2.  Acute Lymphatic Leukemia (ALL-L2) - Bạch cầu cấp dòng lympho thể L2 3.  Acute Lymphatic Leukemia (ALL-L3) - Bạch cầu cấp dòng lympho thể L3 4.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M0) - Bạch cầu cấp dòng tủy có độ biệt hóa tối thiểu 5.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M1) - Bạch cầu cấp dòng tủy không trưởng thành 6.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M2) - Bạch cầu cấp dòng tủy trưởng thành 7.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M3) - Bạch cầu cấp thể tiền tủy bào 8.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M3) Hypogranular - Bạch cầu cấp thể tiền tủy bào thể giảm hạt 9.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M4) - Bạch cầu cấp dòng tủy và dòng mono 10. ACUTE MYELOID LEUKEMIA (AML-M5) - BẠCH CẦU CẤP DÒNG MO...

XÉT NGHIỆM YẾU TỐ RF (Rheumatoid Arthritis Factor) - XÉT NGHIỆM QUAN TRỌNG TRONG CHẨN ĐOÁN VIÊM KHỚP DẠNG THẤP

XÉT NGHIỆM YẾU TỐ RF (Rheumatoid Arthritis Factor) - XÉT NGHIỆM QUAN TRỌNG TRONG CHẨN ĐOÁN VIÊM KHỚP DẠNG THẤP NHẮC LẠI SINH LÝ Viêm khớp dạng thấp là một tình trạng viêm tiến triển mạn tính của mô liên kết tác động chủ yếu tới các khớp nhỏ ngoại vi như khớp ngón tay và cổ tay. Đây là một bệnh hệ thống và nó cũng có thể tác động tới các hệ thống khác của cơ thể ngoài biểu hiện viêm khớp. Phản ứng tự miễn xẩy ra ở mô hoạt dịch, dẫn tới tình trạng sưng đau, nóng, đỏ da và mất chức năng ở vị trí các khớp bị tác động. Trong quá trình viêm, các kháng thể phối hợp cùng với các kháng nguyên tương ứng hình thành các phức hợp miễn dịch. Các phức hợp này lắng đọng tại mô hoạt dịch, kích hoạt phản ứng viêm và dẫn tới tổn thương được thấy tại khớp ở các BN bị viêm khớp dạng thấp. Một trong các test chẩn đoán đối với viêm khớp dạng thấp là XN tìm yếu tố dạng thấp (rheumatoid factor) . Yếu tố dạng thấp (RF) là các globulin miễn dịch (thường gặp nhất là typ IgM) được cơ thể sản xuất ra để ...

NGUYÊN LÝ HOẠT ĐỘNG CỦA HÓA CHẤT VÀ MÁY PHÂN TÍCH HUYẾT HỌC

NGUYÊN LÝ HOẠT ĐỘNG CỦA HÓA CHẤT VÀ MÁY PHÂN TÍCH HUYẾT HỌC Labnotes123 hiểu được rằng đa số chúng ta không có quá nhiều thông tin về công dụng của hóa chất huyết học như thế nào, hoạt động phân tích tế bào máu của máy phân tích huyết học diễn ra ra sao. Hiểu được vấn đề đó, Labnotes123 xin được phép vén bức màn bí mật này để mở ra kiến thức rộng mở hơn gửi tới mọi người, cộng đồng sinh viên và những người làm xét nghiệm! Chúng tôi xin gửi lời CẢM ƠN tới Công ty hóa chất xét nghiệm Héma đã hỗ trợ tài liệu và giúp đỡ chúng tôi thực hiện bài viết này! NỘI DUNG I - ĐẶC ĐIỂM VÀ THÀNH PHẦN CỦA HÓA CHẤT HUYẾT HỌC II - MÔ TẢ HOẠT ĐỘNG PHÂN TÍCH TẾ BÀO MÁU CỦA MÁY HUYẾT HỌC SỬ DỤNG PHƯƠNG PHÁP LASER III - TIÊU CHÍ ĐẢM BẢO HÓA CHẤT VÀ MÁY HUYẾT HỌC HOẠT ĐỘNG TỐT IV- GIỚI THIỆU VỀ CÔNG TY HÓA CHẤT XÉT NGHIỆM HEMA I - ĐẶC ĐIỂM VÀ THÀNH PHẦN CỦA HÓA CHẤT HUYẾT HỌC 1. Hóa chất huyết học Hóa chất huyết học sử dụng trong phân tích tế bào máu đó là các hóa chất pha loãng, t...
Lên đầu trang
Vào giữa trang
Xuống cuối trang