Skip to main content

Should a patient with a hematocrit greater than 55 percent be redrawn for correction always or only when prothrombin time and partial prothrombin time are elevated?

A. Accurate hemostasis and thrombosis results rely heavily on proper collection and processing (preanalytic phase) of the citrated blood specimen. Guidelines from many sources, including the Clinical and Laboratory Standards Institute,1 indicate that blood collection into nonactivating containers (e.g. polypropylene plastic or silicone-coated glass) with proper blood-to-anticoagulant ratio is required. Trisodium citrate tubes are available in a 3.2 percent or 3.8 percent concentration. A laboratory should choose a single concentration and not use the two citrate concentrations interchangeably.2 The World Health Organization and the CLSI recommend using 3.2 percent sodium citrate (105–109 nm/L), as the thromboplastin International Sensitivity Index values applied in the INR calculation are based on specimens collected in 3.2 percent citrate.2,3
The proper blood-to-anticoagulant ratio, commonly referred to as the “fill volume,” results in a 9:1 ratio of blood to anticoagulant. Underfilled tubes, defined as less than 90 percent of the fill volume, may result in prolongation of calcium-dependent, clot-based testing such as the PT and activated partial thromboplastin time (APTT) assays. Citrate’s anticoagulant effect is due to chelation of calcium in the specimen. When calcium is unavailable, coagulation cannot occur. During the analytic testing phase, a premeasured amount of calcium is added back, which allows coagulation to occur. If the citrate anticoagulant concentration is too high, the amount of calcium available during the testing phase is decreased, and the resulting time to clot formation is prolonged.
Underfilled sodium citrate tube. Citrate distributes only in plasma and if a tube is underfilled, the reduced plasma volume will contain more citrate anticoagulant, leading to increased calcium chelation (see citrate tubes A–E). Furthermore, there is an increased proportional volume of anticoagulant due to the lower plasma volume, which results in a potential dilution effect.2
The net effect is prolongation of clot-based assays (e.g. APTT, PT, protein C/protein S clot-based activity assays, and clot-based factor activity assays). The potential for erroneous results is often more pronounced in specimen tubes containing 3.8 percent sodium citrate or in smaller-volume containers such as half-draw or pediatric collection tubes.2,3
Hematocrit greater than 55 percent. Laboratories must also monitor for specimens with a hematocrit greater than 55 percent. In this situation, the plasma volume is reduced, resulting in a reduced plasma volume similar to that of an underfilled tube. The CAP hematology and coagulation checklist requires that laboratories have a written procedure for detection and special handling of specimens with elevated hematocrits.4 The amount of anticoagulant may require an adjustment in samples containing a hematocrit above 55 percent. The most efficient method to determine the appropriate citrate volume is to include a table in the laboratory specimen collection procedure indicating the modified volume of citrate for hematocrits greater than 55 percent. The formula to determine the correct volume of citrate for a given hematocrit is as follows:5
C = (1.85×10-3)(100−Hct)(V blood), where C indicates the volume (mL) citrate needed in the tube; Hct (%), the hematocrit of the patient; and V, the volume (mL) of whole blood. Note: In a 3.5 mL specimen tube, the volume of blood drawn is 3.15 mL (i.e. V=3.15 mL in this equation).
Citrate tubes illustrating various collection volumes, hematocrits (Hct), and the corresponding plasma volumes. A and B: Appropriately filled citrate tube and corresponding plasma volume (Hct: 42.3 percent). C and D: Underfilled citrate tube and corresponding plasma volume (Hct: 42.3 percent). E: Appropriately filled citrate tube with reduced plasma volume from a sample with an increased hematocrit (Hct: 65.6 percent). Note: the reduced plasma volume is similar to that of an underfilled tube (tube D).
Citrate tubes illustrating various collection volumes, hematocrits (Hct), and the corresponding plasma volumes. A and B: Appropriately filled citrate tube and corresponding plasma volume (Hct: 42.3 percent). C and D: Underfilled citrate tube and corresponding plasma volume (Hct: 42.3 percent). E: Appropriately filled citrate tube with reduced plasma volume from a sample with an increased hematocrit (Hct: 65.6 percent). Note: the reduced plasma volume is similar to that of an underfilled tube (tube D).

In theory, should an underfilled tube or specimen with a hematocrit greater than 55 percent actually show normal screening PT or APTT coagulation results, one can conclude the patient has normal hemostatic results. However, this may be a deviation from standard operating procedure, so the medical director should make the final decision. Only the laboratory medical director or a qualified laboratory physician should approve deviations from an SOP. Before a laboratory physician approves the results from an improperly filled specimen collection tube, an investigation into the patient’s clinical situation and indication for testing should be reviewed. There are situations in which re-collection may pose increased risk to a patient (a neonate, for example); in such cases performing the basic screening coagulation assays is indicated, and if the results are within normal limits, the laboratory physician may choose to release those results. Coagulation assays that do not rely on clot formation are often acceptable for testing, yet approval for testing should also be determined by the pathologist.
Other calcium-dependent, clot-based special coagulation assays such as the protein C (PC) and protein S (PS) activity assays, which use PT or APTT methodology, should not be performed on an over-citrated specimen. In the PC and PS assays, falsely prolonged clotting times may result in overestimation of PC or PS activity. Thus, an over-citrated specimen secondary to an underfilled tube or hematocrit greater than 55 percent may be misinterpreted as having normal PC or PS activity. In the clot-based PC and PS activity assays, a short time to the clotting endpoint (fibrin formation) correlates to abnormally low PS and/or PS activity. Therefore, low PC and/or PS activity results from specimens that are underfilled or have hematocrit greater than 55 percent may represent a true, “qualitatively” low value, yet the accuracy (i.e. exact value) of the activity would be in question; if testing is performed, the pathologists must review these results and determine how (or if) the result should be reported. Clot-based factor activity assays are also subject to these preanalytic errors. Over-citrated specimens may cause falsely prolonged clotting times in the factor activity assays, resulting in erroneously low factor activity levels.
Overfilled sodium citrate tube. Overfilled specimen collection tubes can also occur. A common cause for overfilled specimen tubes is when whole blood is first drawn into a syringe and then forcibly injected into a specimen tube. Overfilled citrate tubes can also occur when the stopper (cap) is removed and additional blood is added. This may be an indication that a specimen from one collection tube was poured (added) into a second collection tube, and this practice is unacceptable.2 Overfilled tubes may result in poor mixing of the anticoagulant and lead to inaccurate results. Regardless of the cause of an overfilled tube, it violates the 9:1 ratio, and testing should be approved only by the pathologist.
In conclusion, improperly filled specimen tubes should call into question the collection process. The guidelines provided by CLSI H21-A5 clearly state, “Specimens that are clotted, collected in the wrong anticoagulant type (e.g., EDTA, sodium heparin), have other than a 9:1 blood to anticoagulation ratio, or are collected or stored in a container with an activating surface, are not suitable for testing and should be rejected [italics added].”1 One must be cautious when accepting an improperly collected specimen. Approving the specimen for testing often undermines the strict specimen collection requirements designed for accurate coagulation test results and patient safety. Making exceptions to these rules may falsely reassure clinical medical providers that improperly filled citrate specimen tubes are acceptable. Exceptions to the re-collection for underfilled tubes or patients with hematocrit greater than 55 percent should be considered only when screening PT and/or when APTT test results are normal or when specimen re-collection is not possible.

http://captodayonline.com/qa-column-0816/
  1. Clinical and Laboratory Standards Institute. Collection, Transport, and Processing of Blood Specimens for Testing Plasma-Based Coagulation Assays and Molecular Hemostasis Assays; Approved Guideline—Fifth Edition (H21-A5). Jan. 23, 2008.
  2. Kitchen S, Olson JD, Preston FE, eds. Quality in Laboratory Hemostasis and Thrombosis. 2nd ed. Chichester, West Sussex, U.K.: Wiley-Blackwell; 2013:45–56.
  3. Bennett ST, Lehman CM, Rodgers GM, eds. Laboratory Hemostasis: A Practical Guide for Pathologists. 2nd ed. Cham, Switzerland: Springer International; 2015: 173–175.
  4. College of American Pathologists. Hematology and coagulation checklist. July 28, 2015.
  5. Kottke-Marchant K. An Algorithmic Approach to Hemostasis Testing. 2nd ed. Northfield, Ill.: CAP Press; 2016:46–47.

CÁC BÀI ĐĂNG ĐƯỢC XEM NHIỀU

Atlas CÁC DÒNG TẾ BÀO MÁU BÌNH THƯỜNG

ATLAS CÁC DÒNG TẾ BÀO MÁU BÌNH THƯỜNG DÒNG BẠCH CẦU   1. Hemocytoblast (Nguyên bào máu) 2. Myeloblast (Nguyên tủy bào) 3.Neutrophil promyelocyte (Tiền tủy bào trung tính) 4. Neutrophil myelocyte (Tủy bào trung tính) 5. Neutrophil metamyelocyte (Hậu tủy bào trung tính) 6.Neutrophil band (Bạch cầu đũa) 7. Neutrophil segmented (Bạch cầu đoạn trung tính) 8.  Neutrophil myelocyte/metamyelocyte/band/segmented (Tủy bào/Hậu tủy bào/bạch cầu đũa/bạch cầu đoạn trung tính)   9. Eosinophil promyelocyte (Tiền tủy bào ưa acid) 10. Eosinophil myelocyte (Tủy bào ưa acid) 11. Eosinophil metamyelocyte (Hậu tủy bào ưa acid) 12. Eosinophil band (Bạch cầu đũa ưa acid) 13. Eosinophil segmented (Bạch cầu đoạn ưa acid) 14. Neutrophil/Eosinophil segmented (Bạch cầu đoạn trung tính/Bạch cầu đoạn ưa acid) 15. Basophil myelocyte (Tủy bào ưa base) 16. Basophil segmented (Bạch cầu đoạn ưa base) DÒNG LYMPHO...

CHỈ SỐ HỒNG CẦU LƯỚI THỰC (Corrected Reticulocyte Count - CRC) LÀ GÌ? TẠI SAO VIỆC XÁC ĐỊNH NÓ CÓ VAI TRÒ CỰC KỲ QUAN TRỌNG TRONG ĐÁNH GIÁ TÌNH TRẠNG THIẾU MÁU

CHỈ SỐ HỒNG CẦU LƯỚI THỰC (Corrected Reticulocyte Count - CRC) LÀ GÌ? TẠI SAO VIỆC XÁC ĐỊNH NÓ CÓ VAI TRÒ CỰC KỲ QUAN TRỌNG TRONG ĐÁNH GIÁ TÌNH TRẠNG THIẾU MÁU Hầu như các bạn đều biết đến Chỉ số Hồng cầu lưới máu ngoại vi (Reticulocyte-Ret) và vai trò quan trọng của nó. Tuy nhiên, việc đánh giá thiếu máu dựa vào chỉ số Ret có thể dẫn tới sai lầm, vậy tại sao lại sai lầm, và để tránh sai lầm trong đánh giá người ta dùng chỉ số gì? Câu trả lời, đó là CRC - chỉ số hồng cầu lưới thực. 1. Hồng cầu lưới ở máu ngoại vi (Ret) là gì? Vai trò của hồng cầu lưới 2. Sai lầm khi sử dụng chỉ số Ret trong đánh giá thiếu máu 3. Chỉ số hồng cầu lưới thực (CRC - Corrected reticulocyte count) 1. RETICULOCYTE COUNT (Chỉ số hồng cầu lưới máu ngoại vi) Hồng cầu lưới (RET) là các hồng cầu non được giải phóng từ tủy xương ra máu ngoại vi. Sau 24h ở máu ngoại vi, Ret sẽ "chín" và trở thành hồng cầu trưởng thành. CÁCH XÁC ĐỊNH Có thể dễ dàng xác định Ret bằng cách...

TẠI SAO PHỤ NỮ MANG THAI LẠI CÓ SỰ TĂNG SỐ LƯỢNG BẠCH CẦU?

 TẠI SAO PHỤ NỮ MANG THAI LẠI CÓ SỰ TĂNG SỐ LƯỢNG BẠCH CẦU? Trong thời kỳ mang thai, số lượng bạch cầu tăng thêm kho ảng < 6 G/L. Tăng bạch cầu này xảy ra là do phản ứng stress sinh lý (the physiologic stress) gây ra bởi tình trạng mang thai.  (Stress sinh lý là một phản ứng của cơ thế đến tác nhân gây stress, ví dụ như sự thay đổi môi trường, hay một tác nhân kích thích, ở đây là tình trạng mang thai của cơ thể người nữ). Tăng bạch cầu đoạn trung tính (Neutrophils) là chủ yếu. Điều này có thể do sự suy giảm bạch cầu đoạn trung tính trong chương trình chết tế bào bạch cầu đoạn trung tính (neutrophilic apoptosis) khi mang thai. (Apoptosis hay sự chết tế bào theo chương trình là một quá trình xuyên suốt cuộc sống, giúp cơ thể loại bỏ các tế bào già cỗi, các tế bào không còn cần thiết, các tế bào sai hỏng, bị tổn thương có thể dẫn tới ung thư) Trong bào tương bạch cầu đoạn trung tính có các hạt đặc hiệu trung tính giúp hóa ứng động bạch cầu và thực bào t...

NHỮNG TÓM TẮT QUAN TRỌNG VỀ HỒNG CẦU LƯỚI VÀ CÁCH SỬ DỤNG CHỈ SỐ HỒNG CẦU LƯỚI

HỒNG CẦU LƯỚI (Reticulocytes and reticulocyte count) (Trong bài này CÓ NHIỀU KIẾN THỨC MỚI mà ít sách ở Việt Nam đề cập) 1. Sự quan trọng của hồng cầu lưới (Reticulocytes-Ret) Ret là các hồng cầu non mới được giải phóng từ tuỷ xương ra máu ngoại vi Sự xuất hiện Ret ở máu ngoại vi, là chỉ điểm (marker) cho thấy quá trình tạo hồng cầu có hiệu quả. Sự tạo hồng cầu có hiệu quả cho thấy, tuỷ xương phản ứng tốt với tình trạng thiếu máu. - Có mối tương quan giữa tăng tổng hợp và giải phóng Ret từ tuỷ xương ra máu ngoại vi, khi có tình trạng thiếu máu. 2. Có thể dễ dàng xác định được Ret ở máu ngoại vi bằng cách nhuộm máu tươi với thuốc nhuộm xanh methylene (hoặc có thể dùng xanh cresyl). Đặc điểm Ret sau nhuộm: Có những sợi ARN mảnh như sợi chỉ, nằm trong bào tương của các hồng cầu non 3. Sau 24 giờ ở máu ngoại vi, hồng cầu lưới sẽ "chín" và trở thành hồng cầu trưởng thành. Sự trưởng thành xảy ra được là nhờ sự giúp đỡ của đại thực bào ở lách. 4. Số ...

Tại sao thường sử dụng chống đông EDTA trong xét nghiệm HbA1c? Và có thể sử dụng chống đông khác (Heparin, NaF, Natri Citrat) được không?

Tại sao thường sử dụng ống chống đông EDTA để thu thập bênh phẩm máu thực hiện xét nghiệm HbA1c? Có thể sử dụng ống chống đông khác như (Na-Citrate , Heparin, Na-flouride) thay thế được không? Để trả lời cho câu hỏi này, tôi sẽ viện dẫn một nghiên cứu của Mailankot và các cộng sự (Mailankot M, Thomas T, Praveena P, Jacob J, Benjamin JR, Vasudevan DM, et al. Various anticoagulants and fluoride do not affect HbA1C level. Ind J Clin Biochem. 2012;27:209) Nghiên cứu : Tiến hành thu thập mẫu máu vào các ống chống đông EDTA, Heparin, Na-citrate, Na-flouride trên cùng một mẫu máu, rồi định lượng nồng độ (%) HbA1C trong 7 ngày, với cùng nhiệt độ bào quản 4 độ C. Kết quả cho thấy: KHÔNG CÓ SỰ THAY ĐỔI ĐÁNG KỂ NỒNG ĐỘ HbA1c ở các ống chống đông EDTA, Heparin, Na-citrate, Na-flouride khi bảo quản ở 4 độ C trong 7 ngày (xem hình ảnh biểu diễn kết quả bên dưới) Bảng thể hiện nồng độ HbA1C ở các mẫu có ĐTĐ và không ĐTĐ ở các ống chống đông khác nhau Đường biểu diễn nồng độ HbA1C ở n...

Atlas TẾ BÀO MÁU TRONG BỆNH BẠCH CẦU LEUKEMIA

ATLAS TẾ BÀO MÁU TRONG BỆNH BẠCH CẦU LEUKEMIA 1. Acute Lymphatic Leukemia (ALL-L1) - Bạch cầu cấp dòng lympho thể L1 2.  Acute Lymphatic Leukemia (ALL-L2) - Bạch cầu cấp dòng lympho thể L2 3.  Acute Lymphatic Leukemia (ALL-L3) - Bạch cầu cấp dòng lympho thể L3 4.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M0) - Bạch cầu cấp dòng tủy có độ biệt hóa tối thiểu 5.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M1) - Bạch cầu cấp dòng tủy không trưởng thành 6.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M2) - Bạch cầu cấp dòng tủy trưởng thành 7.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M3) - Bạch cầu cấp thể tiền tủy bào 8.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M3) Hypogranular - Bạch cầu cấp thể tiền tủy bào thể giảm hạt 9.  Acute Myeloid Leukemia (AML-M4) - Bạch cầu cấp dòng tủy và dòng mono 10. ACUTE MYELOID LEUKEMIA (AML-M5) - BẠCH CẦU CẤP DÒNG MO...

XÉT NGHIỆM YẾU TỐ RF (Rheumatoid Arthritis Factor) - XÉT NGHIỆM QUAN TRỌNG TRONG CHẨN ĐOÁN VIÊM KHỚP DẠNG THẤP

XÉT NGHIỆM YẾU TỐ RF (Rheumatoid Arthritis Factor) - XÉT NGHIỆM QUAN TRỌNG TRONG CHẨN ĐOÁN VIÊM KHỚP DẠNG THẤP NHẮC LẠI SINH LÝ Viêm khớp dạng thấp là một tình trạng viêm tiến triển mạn tính của mô liên kết tác động chủ yếu tới các khớp nhỏ ngoại vi như khớp ngón tay và cổ tay. Đây là một bệnh hệ thống và nó cũng có thể tác động tới các hệ thống khác của cơ thể ngoài biểu hiện viêm khớp. Phản ứng tự miễn xẩy ra ở mô hoạt dịch, dẫn tới tình trạng sưng đau, nóng, đỏ da và mất chức năng ở vị trí các khớp bị tác động. Trong quá trình viêm, các kháng thể phối hợp cùng với các kháng nguyên tương ứng hình thành các phức hợp miễn dịch. Các phức hợp này lắng đọng tại mô hoạt dịch, kích hoạt phản ứng viêm và dẫn tới tổn thương được thấy tại khớp ở các BN bị viêm khớp dạng thấp. Một trong các test chẩn đoán đối với viêm khớp dạng thấp là XN tìm yếu tố dạng thấp (rheumatoid factor) . Yếu tố dạng thấp (RF) là các globulin miễn dịch (thường gặp nhất là typ IgM) được cơ thể sản xuất ra để ...

NGUYÊN LÝ HOẠT ĐỘNG CỦA HÓA CHẤT VÀ MÁY PHÂN TÍCH HUYẾT HỌC

NGUYÊN LÝ HOẠT ĐỘNG CỦA HÓA CHẤT VÀ MÁY PHÂN TÍCH HUYẾT HỌC Labnotes123 hiểu được rằng đa số chúng ta không có quá nhiều thông tin về công dụng của hóa chất huyết học như thế nào, hoạt động phân tích tế bào máu của máy phân tích huyết học diễn ra ra sao. Hiểu được vấn đề đó, Labnotes123 xin được phép vén bức màn bí mật này để mở ra kiến thức rộng mở hơn gửi tới mọi người, cộng đồng sinh viên và những người làm xét nghiệm! Chúng tôi xin gửi lời CẢM ƠN tới Công ty hóa chất xét nghiệm Héma đã hỗ trợ tài liệu và giúp đỡ chúng tôi thực hiện bài viết này! NỘI DUNG I - ĐẶC ĐIỂM VÀ THÀNH PHẦN CỦA HÓA CHẤT HUYẾT HỌC II - MÔ TẢ HOẠT ĐỘNG PHÂN TÍCH TẾ BÀO MÁU CỦA MÁY HUYẾT HỌC SỬ DỤNG PHƯƠNG PHÁP LASER III - TIÊU CHÍ ĐẢM BẢO HÓA CHẤT VÀ MÁY HUYẾT HỌC HOẠT ĐỘNG TỐT IV- GIỚI THIỆU VỀ CÔNG TY HÓA CHẤT XÉT NGHIỆM HEMA I - ĐẶC ĐIỂM VÀ THÀNH PHẦN CỦA HÓA CHẤT HUYẾT HỌC 1. Hóa chất huyết học Hóa chất huyết học sử dụng trong phân tích tế bào máu đó là các hóa chất pha loãng, t...
Lên đầu trang
Vào giữa trang
Xuống cuối trang